Исследование компонентного состава жирных кислот надземной части Leonurus deminutus V.I. Kreсz.
- Авторы: Соколова Я.В.1, Мирович В.М.1, Семенова Н.В.2, Дударева Л.В.2
-
Учреждения:
- ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России
- ФГБУН «Сибирский институт физиологии и биохимии растений» Сибирского отделения РАН
- Выпуск: Том 24, № 2 (2024)
- Страницы: 102-106
- Раздел: ФАРМАЦЕВТИЧЕСКАЯ ХИМИЯ, ФАРМАКОГНОЗИЯ
- Статья опубликована: 09.12.2024
- URL: https://aspvestnik.ru/2410-3764/article/view/611066
- DOI: https://doi.org/10.35693/AVP611066
- ID: 611066
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Цель – изучение состава жирных кислот (ЖК) надземной части L. deminutus.
Материал и методы. Объектами для анализа являлись образцы надземной части L. deminutus, собранные на территории Иркутской области в период массового цветения (июль 2021 г.). Анализ жирнокислотного состава сырья L. deminutus проводили методом газовой хроматографии/масс-спектрометрией (ГХ/МС) на приборе Agilent Technologies 5973/6890N MSD/DS в трех повторениях. Относительное содержание каждой кислоты было установлено в массовых процентах от всей суммы ЖК в сырье (метод внутренней нормализации). Абсолютное содержание ЖК рассчитывали методом внутреннего стандарта.
Результаты. Исследован компонентный состав ЖК надземной части L. deminutus, идентифицировано 14 соединений, из них 8 насыщенных ЖК (5,10±0,12 мг/г) и 6 ненасыщенных ЖК (13,41±0,25 мг/г). Среди насыщенных ЖК преобладают пальмитиновая кислота – 3,41±0,07 мг/г и стеариновая кислота – 0,88±0,02 мг/г. Доминирующими соединениями среди ненасыщенных ЖК являются линолевая (7,78±0,14 мг/г), α-линоленовая (2,21±0,04 мг/г) и олеиновая (2,19±0,04 мг/г) кислоты.
Выводы. Впервые исследован качественный состав ЖК в надземной части L. deminutus, установлено их количественное содержание. L. deminutus является перспективным для использования в медицинской практике и может быть рекомендован в качестве дополнительного источника линолевой и α-линоленовой ЖК, незаменимых для человека.
Полный текст
Список сокращений
ГХ/МС – газовая хроматография/масс-спектрометрия; ЖК – жирные кислоты; ЛРС – лекарственное растительное сырье; МЭЖК – метиловые эфиры жирных кислот.
ВВЕДЕНИЕ
Многие представители рода пустырник (Leonurus) традиционно используются в медицинской практике [1–3]. На территории Российской Федерации разрешены к применению два фармакопейных вида рода Leonurus – пустырник сердечный (Leonurus cardiaca) и пустырник пятилопастной (Leonurus quinquelobatus)1. Химический состав травы пустырника включает многие биологически активные соединения (БАС), из них основными являются иридоиды, флавоноиды, фенилпропаноиды и алкалоиды [3, 4]. L. quinquelobatus распространен в Европейской части России, Западной Сибири и части Восточной Сибири (Республика Саха), как заносный вид встречается в дальневосточном регионе [5–8]. Другой фармакопейный вид L. cardiaca на территории России не распространен, редко встречается на юге европейской части страны и в Калининградской области [8].
Перспективным направлением в разработке эффективных лекарственных средств является изучение новых видов растений, являющихся близкородственными к лекарственным. На территории Сибири среди представителей рода Leonurus преобладает пустырник уменьшенный (L. deminutus) [5, 8]. Надземные органы этого вида в народной медицине рекомендуют в виде настоев, сока, настоек при бессонницах, горячках, состояниях нервного истощения [9]. По результатам фармакологического исследования травы L. deminutus установлена седативная и гипотензивная активность ЛРС2[11]. В ходе изучения химического состава надземной части L. deminutus идентифицированы иридоиды, флавоноиды, фенилпропаноиды, исследован минеральный состав сырья, установлены основные продукты гидродистилляции [10, 11].
Жирные кислоты (ЖК) способны регулировать липидный обмен, восстанавливать функциональную активность клеточных мембран, оказывают противовоспалительное, иммуностимулирующее, антимикробное действие [12, 13]. Ранее проводились исследования жирнокислотного состава надземных органов некоторых представителей рода Leonurus. В надземной части L. japonicus идентифицировали две насыщенные ЖК (α-линоленовая и линолевая) и 10 ненасыщенных ЖК, при этом их количественное содержание не определялось [14]. В траве L. turkestanicus, произрастающего на территории Узбекистана, установили содержание пальмитиновой кислоты – 1,47% от общей суммы выделенных соединений [15]. Исследования профиля ЖК фармакопейного вида L. quinquelobatus методом ГХ/МС показало наличие 3 ненасыщенных и 4 насыщенных ЖК, из них максимальное количество приходится на стеариновую кислоту (2,84%) и линолевую кислоту (2,56%) [16]. Сведения об изучении компонентного состава ЖК травы L. deminutus отсутствуют. Данное исследование позволит расширить возможность потенциального применения ЛРС в медицинской практике.
ЦЕЛЬ
Изучение жирнокислотного состава надземной части L. deminutus.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Для анализа были собраны надземные органы L. deminutus в окрестностях Иркутска в период цветения (18.07.2021 г.). Фитомассу сушили в хорошо проветриваемых чердачных помещениях, сохраняя растительный материал от воздействия солнечного света. Образцы сырья измельчали до размера частиц 1 мм, навеску в количестве 0,1000 г помещали в ступку, фиксировали жидким азотом и гомогенизировали. На данном этапе для контроля экстрагирования липидов (в %) добавляли известное количество нонадекановой кислоты. Экстракцию проводили при следующих условиях: 10 мл экстрагента трихлорметан-метанол (2:1), продолжительность процесса 30 минут, температура 25ºС. В качестве антиоксиданта добавляли ионол (из расчета 1,25 мг вещества на 100 мл указанного экстрагента). Полученное извлечение фильтровали в колбу коническую, фильтр и ступку с остатками сырья трижды промывали экстрагентом и объединяли с извлечением. В делительную воронку помещали объединенный фильтрат, добавляли 2 мл воды очищенной для лучшего расслаивания фаз. Органический слой, содержащий сумму липидов, отделяли от водной фазы. Затем из полученного липидного экстракта отгоняли растворитель при помощи роторного испарителя RVO-64.
Сухой остаток растворяли в 2 мл 1% раствора H2SO4 в метаноле, затем нагревали смесь в течение 30 минут при температуре 80ºС. Полученные метиловые эфиры жирных кислот (МЭЖК) экстрагировали 5 мл Н-гексана в трехкратной повторности. Затем проводили дополнительную очистку вытяжки, используя высокоэффективные пластинки марки Sorbfil.
Состав МЭЖК определяли методом газовой хроматографии/масс-спектрометрии (ГХ/МС) на приборе Agilent Technologies 6890N с масс-детектором 5973N и колонкой HP-INNOWAX. Анализ проводили при скорости потока для газа-носителя (гелия) – 1 мл/мин, объеме пробы для ввода – 1 мкл (режим деления потоков (5:1), температура испарителя = 250°С, температура источника ионов = 230°С, температура детектора = 150°С. Сканирование осуществлялось в диапазоне 41–450 а.е.м. Разделение смеси МЭЖК проводили в изотермическом режиме при температуре 200°С.
Идентификацию соединений проводили с использованием библиотеки масс-спектров NIST 08, смеси стандартов МЭЖК марки Sigma-Aldrich (Supelco F.A.M.E. Mix C8-C24 № LB43742), а также рассчитывали время удерживания по эквивалентной длине цепи. Относительное содержание каждой кислоты было установлено в массовых процентах от всей суммы ЖК в сырье (метод внутренней нормализации) [17]. Абсолютное содержание ЖК рассчитывали методом внутреннего стандарта (нонадекановая кислота) по формуле:
,
где Cх – содержание определяемого компонента, мг; Cвс – известное содержание внутреннего стандарта, мг; Sx – площадь пика искомого компонента, условные единицы (у.е); Sвс – площадь пика внутреннего стандарта, у.е.
Анализ жирнокислотного состава надземной части L. deminutus проводили в трех повторностях. Результаты обрабатывали статистически, определяли средние величины и их стандартные отклонения в соответствии с требованиями ОФС.1.1.0013 «Статистическая обработка результатов физических, физико-химических и химических испытаний» ГФ РФ XV издания [4]. Достоверность устанавливали с помощью t-критерия Стьюдента (доверительная вероятность 0,95).
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
В ходе анализа профиля ЖК надземной части L. deminutus было идентифицировано 14 соединений с разным количеством атомов углерода от С14 до С23, из них 8 соединений являются насыщенными ЖК (таблица 1).
Таблица 1 / Table 1
Компонентный состав ЖК из надземных органов L. deminutus
Component composition of fatty acids from the aerial organs of L. deminutus
№ в-ва | Тривиальное название | Сокращенное обозначение ЖК | Время удерживания, мин | Содержание ЖК (мг/г) | Относительное содержание ЖК, % |
Насыщенные жирные кислоты | |||||
1 | Миристиновая кислота | 14:0 | 4,13 | 0,08±0,00 | 0,44 |
2 | Пентадециловая кислота | 15:0 | 5,25 | 0,02±0,00 | 0,09 |
3 | Пальмитиновая кислота | 16:0 | 6,783 | 3,41±0,07 | 18,41 |
4 | Маргариновая кислота | 17:0 | 8,833 | 0,07±0,00 | 0,36 |
5 | Стеариновая кислота | 18:0 | 11,722 | 0,88±0,02 | 4,76 |
6 | Арахиновая кислота | 20:0 | 21,169 | 0,25±0,01 | 1,35 |
7 | Бегеновая кислота | 22:0 | 39,181 | 0,33±0,01 | 1,76 |
8 | Трикозиловая кислота | 23:0 | 53,406 | 0,06±0,00 | 0,33 |
Ненасыщенные жирные кислоты | |||||
9 | Пальмитолеиновая кислота (изомер) | 16:1n-5 | 7,76 | 0,12±0,00 | 0,65 |
10 | Олеиновая кислота | 18:1n-9 | 12,534 | 2,19±0,04 | 11,82 |
11 | Цис-вакценовая кислота | 18:1n-7 | 12,743 | 0,49±0,01 | 2,65 |
12 | Линолевая кислота | 18:2n-6 | 14,489 | 7,78±0,14 | 42,03 |
13 | α-Линоленовая кислота | 18:3n-3 | 17,454 | 2,21±0,04 | 11,96 |
14 | Гондоиновая кислота | 20:1n-11 | 22,209 | 0,62±0,02 | 3,38 |
⅀ насыщенных ЖК ⅀ ненасыщенных ЖК | 5,10±0,12 13,41±0,25 | 27,5 72,5 |
Доминирующими соединениями среди насыщенных ЖК в сырье L. deminutus являются пальмитиновая кислота – 3,41±0,07 мг/г и стеариновая кислота – 0,88±0,02 мг/г. Пальмитиновая кислота является наиболее распространенной среди насыщенных ЖК, входит в структуры фосфолипидов и гликопротеидов растительных мембран, также участвует в процессах адаптации растений в условиях изменения температуры воздуха и водного дефицита [18].
Содержание остальных насыщенных ЖК в траве L. deminutus незначительно и варьируется от 0,02±0,00 мг/г до 0,33±0,01 мг/г.
Общее количество насыщенных ЖК в надземной части L. deminutus составляет 5,10±0,12 мг/г, при этом в процентном соотношении их содержание – 27,5% от общей суммы ЖК.
Кроме того, были идентифицированы 6 соединений группы ненасыщенных ЖК, которые представлены моноеновыми (9–11, 14) и полиеновыми (12, 13) кислотами (таблица 1). Среди компонентов ненасыщенных ЖК в надземной части L. deminutus отмечается высокое содержание кислот линолевой – 7,78±0,14 мг/г, α-линоленовой – 2,21±0,04 мг/г и олеиновой – 2,19±0,04 мг/г.
Суммарное содержание ненасыщенных ЖК в траве L. deminutus составляет 13,41±0,25 мг/г, что практически в два раза превышает количество насыщенных ЖК.
При исследовании содержания ненасыщенных ЖК важно установить соотношение линолевой и α-линоленовой кислот в сырье. По данным литературы, избыток α-линоленовой кислоты над линолевой в соотношении 5:1 отрицательно влияет на нейронную активность мозга [19], при 10:1 происходит обострение бронхиальной астмы [20]. В надземных органах L. deminutus соотношение α-линоленовой и линолевой кислот находится в пределах 3:1, что считается оптимальным для рекомендации сырья в качестве дополнительного источника полиеновых ЖК [20, 21].
ВЫВОДЫ
- Впервые исследован компонентный состав ЖК надземной части L. deminutus. Идентифицировано 14 соединений, из них 8 относятся к насыщенным ЖК, 6 – к ненасыщенным ЖК.
- Суммарное содержание насыщенных ЖК составляет 5,10±0,12 мг/г (относительное содержание 27,5%). Преобладающими среди данной группы ЖК являются пальмитиновая кислота – 3,41±0,07 мг/г и стеариновая кислота – 0,88±0,02 мг/г.
- Количественное содержание ненасыщенных ЖК в надземной части L. deminutus составляет 13,41±0,25 мг/г (относительное содержание 72,5%). Преобладают кислоты линолевая – 7,78±0,14 мг/г, α-линоленовая – 2,21±0,04 мг/г и олеиновая – 2,19±0,04 мг/г.
- Соотношение линолевой и α-линоленовой кислоты в надземной части L. deminutus составляет 3:1, поэтому сырье может быть рекомендовано в качестве дополнительного сбалансированного источника эссенциальных ЖК для человека.
1 Государственная фармакопея Российской Федерации XV издания. Доступно по: https://pharmacopoeia.regmed.ru/pharmacopoeia/izdanie-15/
2 Мирович В.М., Соколова Я.В., Цыренжапов А.В., Оленников Д.Н. Патент «Способ получения растительного средства, обладающего седативным, гипотензивным и антиоксидантным действием» №RU 2792361 от 21.03.2023. Доступно по: https://patents.google.com/patent/RU2792361C1/ru
Об авторах
Я. В. Соколова
ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России
Автор, ответственный за переписку.
Email: sokolovayana@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1457-9060
ассистент кафедры фармакогнозии и фармацевтической технологии
Россия, ИркутскВ. М. Мирович
ФГБОУ ВО «Иркутский государственный медицинский университет» Минздрава России
Email: mirko02@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0003-2092-1547
д-р фарм. наук, профессор, заведующая кафедрой фармакогнозии и фармацевтической технологии
Россия, ИркутскН. В. Семенова
ФГБУН «Сибирский институт физиологии и биохимии растений» Сибирского отделения РАН
Email: tashasemyonova@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-1076-3944
канд. биол. наук, ведущий технолог лаборатории физико-химических методов исследований
Россия, ИркутскЛ. В. Дударева
ФГБУН «Сибирский институт физиологии и биохимии растений» Сибирского отделения РАН
Email: laser@sifibr.irk.ru
ORCID iD: 0000-0003-1185-7467
канд. биол. наук, заведующая лабораторией физико-химических методов исследований
Россия, ИркутскСписок литературы
- Uritu CM, Mihai CT, Stanciu G-D, et al. Medicinal Plants of the Family Lamiaceae in Pain Therapy: A Review. Pain Research and Management. 2018:1-44. DOI: https://doi.org/10.1155/2018/7801543
- Zvezdina ЕV, Dayronas JV, Bochkareva II, et al. Members of the family Lamiaceae Lindl. as sources of medicinal plant raw materials to obtain neurotropic drugs. Pharmacy & Pharmacology. 2020;8(1):4-28. [Звездина Е.В., Дайронас Ж.В., Бочкарева И.И., и др. Представители семейства Lamiaceae Lindl. как источники лекарственного растительного сырья для получения нейротропных средств (обзор). Фармация и фармакология. 2020;8(1):4-8]. DOI: https://doi.org/10.19163/2307-9266-2020-8-1-4-28
- Zhang R-H, Liu Z-K, Yang D-S, et al. Phytochemistry and pharmacology of the genus Leonurus: The herb to benefit the mothers and more. Phytochemistry. 2018;147:167-83. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2017.12.016
- Wojtyniak K, Szymanski M, Matlawska I. Leonurus cardiaca L. (Motherwort): A Review of its Phytochemistry and Pharmacology. Phytotherapy Research. 2012;27(8):1115-20. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.4850
- Malyshev LI. Flora of Siberia. Vol. 11, Novosibirsk, 1997. (In Russ.). [Малышев Л.И. Флора Сибири. Т. 11, Новосибирск, 1997].
- Kharkevich SS. Vascular plants of the Soviet Far East. Vol. 7, SPb., 1995. (In Russ.) [Харкевич С.С. Сосудистые растения советского Дальнего Востока. Т. 7, Санкт-Петербург, 1995].
- Krestovskaya TV. System and synopsis of the genus Leonurus L. (Lamiaceae). Novitates Systematicae Plantarum Vascularium. 1989;26:142-149. (In Russ.). [Крестовская Т.В. Система и конспект рода Leonurus L. (Lamiaceae). Новости систематики высших растений. 1989;26:142-149].
- Plants of the World Online. Available at: http://powo.science.kew.org/ (16 October 2023).
- Danilova NS, Borisova SZ. The plant of the yakut folk medicine of Leonurus deminutus. Yakut medical journal. 2010;2(30):93-95. (In Russ.). [Данилова Н.С., Борисова С.З. Растение якутской народной медицины пустырник уменьшенный. Якутский медицинский журнал. 2010;2(30):93-95].
- Mirovich VM, Sokolova IV, Chebykin EP. Research of the elemental composition of the aerial organs of Leonurus deminutus V. Krecz. growing in Central Siberia. Humans and their health. 2021;24(4):74-82. [Мирович В.М., Соколова Я.В., Чебыкин Е.П. Исследование элементного состава надземных органов пустырника уменьшенного (Leonurus deminutus V. Kreсz.), произрастающего в Центральной Сибири. Человек и его здоровье. 2021;24(4):74-82]. DOI: https://doi.org/10.21626/vestnik/2021-4/10
- Sokolova IV, Mirovich VM, Dudareva LV, et al. Research of the component composition of hydrodistillation products of Leonurus deminutus V.I. Kreсz herb. Bashkortostan Medical Journal. 2022;17(5):73-76. (In Russ.). [Соколова Я.В., Мирович В.М., Дударева Л.В., и др. Исследование компонентного состава продуктов гидродистилляции Leonurus deminutus V.I. Kreсz травы. Медицинский вестник Башкортостана. 2022;17(5):73-76].
- Wrigley CW, Corke H, Seetharaman K, et al. Encyclopedia of food grains. Vol. 2. Oxford: Academic Press, 2015:257-267.
- Coniglio S, Shumskaya M, Vassiliou E. Unsaturated Fatty Acids and Their Immunomodulatory Properties. Biology. 2023;12(2):279. DOI: https://doi.org/10.3390/biology12020279
- Wagner H, Bauer R, Melchar D, et al. Herba Leonuri – Yimucao. In: Chromatographic Fingerprint Analysis of Herbal Medicines. Springer: Vienna, 2011:707-717. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-7091-0763-8_59
- Mamadalieva NZ, Bobakulov KM, Vinciguerra V, et al. GC-MS and q-NMR based chemotaxonomic evaluation of two Leonurus species. Phytochemical Analysis. 2016;27(5):284-289. DOI: https://doi.org/10.1002/pca.2629
- Parfenov AA, Kolosova OA, Fursa NS. GC/MS determination of component composition of individual groups of natural compounds and pharmacological study of officinal tinctures Valeriana officinalis L.S.L., Leonurus quinquelobatus Gilib. and tincture of herb Borago officinalis L. Proceedings of Voronezh State University. Series: Chemistry. Biology. Pharmacy. 2016;3:134-140. (In Russ.). [Парфенов А.А., Колосова О.А., Фурса Н.С. Хромато-масс-спектрометрическое определение компонентного состава отдельных групп природных соединений и фармакологическое изучение настоек официнального сырья валерианы лекарственной, пустырника пятилопастного и травы бурачника лекарственного. Вестник Воронежского государственного университета. Серия: Химия. Биология. Фармация. 2016;3:134-140]. URL: http://www.vestnik.vsu.ru/pdf/chembio/2016/03/2016-03-24.pdf
- Semenova NV, Shmakov VN, Konstantinov YuM, et al. Phospholipids of Embryogenic and Non-embryogenic Cell Lines of Larix sibirica Ledeb. Russian Journal of Plant Physiology. 2020;67:1076-1082. [Семенова Н.В., Шмаков В.Н., Константинов Ю.М., и др. Фосфолипиды эмбриогенных и неэмбриогенных клеточных линий Larix sibirica Ledeb. Физиология растений. 2020;67:1076-1082]. DOI: https://doi.org/10.1134/S1021443720060151
- Zhukov AV. Palmitic acid and its role in the structure and functions of plant cell membranes. Russian Journal of Plant Physiology. 2015;62(5):706-713. [Жуков А.В. Пальмитиновая кислота и ее роль в строении и функциях мембран растительной клетки. Физиология растений. 2015;62(5):706-713]. DOI: https://doi.org/10.7868/S001533031505019X
- Dec K, Alsaqati M, Morgan J, et al. A high ratio of linoleic acid (n-6 PUFA) to alpha-linolenic acid (n-3 PUFA) adversely affects early stage of human neuronal differentiation and electrophysiological activity of glutamatergic neurons in vitro. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2023;11:1166808. DOI: https://doi.org/10.3389/fcell.2023.1166808
- Morales P, Ferreira I, Carvalho A, et al. Fatty acids profiles of some Spanish wild vegetables. Food Science and Technology International. 2012;18(3):281-290. DOI: https://doi.org/10.1177/1082013211427798
- Bubenchikova VN, Stepnova IV. The fatty acid and mineral composition herbs Picris hieracioides L. Chemistry of plant raw material. 2018;1:113-119. [Бубенчикова В.Н., Степнова И.В. Жирнокислотный и минеральный состав травы горлюхи ястребинковой (Picris hieracioides L.). Химия растительного сырья. 2018;1:113-119]. DOI: https://doi.org/10.14258/jcprm.2018011838
Дополнительные файлы
