Показатели качества препарата гиматомелановых кислот как потенциального противоревматоидного средства

Полный текст

Обоснование

Ревматоидный артрит — хроническое аутоиммунное заболевание неизвестной этиологии, проявляющееся прогрессирующей деструкцией суставов, системным воспалением внутренних органов [4]. Перспективным направлением в лечении ревматоидного артрита считается применение природных факторов [6], в частности, лечебных грязей, обладающих противовоспалительным эффектом. По мнению многих исследователей, терапевтическая ценность пелоидов обусловлена наличием в них специфических органических веществ гуминовой природы [1, 5]. Однако вопрос о терапевтической роли отдельных компонентов гуминовых веществ остается недостаточно изученным, что связано со сложностью их стандартизации. На сегодняшний день однозначно не определены как показатели качества, так и методы контроля качества гуминовых веществ пелоидов, которые зависят от источника извлечения и способа получения субстанций. Идентификационные характеристики, а также физико-химические свойства гуминовых веществ могут претерпевать существенную дивергенцию. Сказанное обусловливает актуальность как стандартизации терапевтически эффективных фракций гуминовых веществ, так и исследование характера их биологического действия на клеточном уровне.

Цель работы заключалась в стандартизации препарата на основе фракции специфических органических веществ пелоидов — гиматомелановых кислот (ГМК) — и обосновании их противовоспалительной активности в модели ревматоидного артрита.

Материалы и методы

ГМК выделяли из низкоминерализованных иловых сульфидных грязей санатория «Сергиевские минеральные воды» (Самарская область) по оригинальной методике [2]. Процесс получения включает стадию многократной очистки, что определяет экологическую чистоту полученного препарата. Проведенные ранее исследования показали, что ГМК пелоидов относятся к V классу токсичности [3]. Контроль качества ГМК осуществляли методами спектрометрии и хроматографии. ИК-спектры препарата получены на спектрометре Spectrum 100 (Perkin Elmer). Подготовку образцов к съемке проводили по технике прессования в форме таблеток с KBr. Спектры ЯМР ¹Н и ¹³С регистрировали с помощью спектрометра Bruker Avance-400 (400,13 и 100,62 мГц) в растворе D₂O. В качестве растворителя использовали дейтерированный 0,1 М раствор гидроксида натрия в тяжелой воде. Содержание углерода, водорода, азота и кислорода определяли с помощью анализатора фирмы Carlo Erba EA-1108 при температуре 1000 °С.

Для определения компонентов субстанции растворы ГМК с концентрацией 1,0 % (масс.) подвергали кислотному гидролизу. В круглодонную колбу с обратным холодильником помещали 10–15 мл 1,0 % раствора ГМК, добавляли равный объем 2,0 моль/л раствора хлороводородной кислоты и термостатировали при температуре 85 °С в течение 56–60 ч. Осадок отделяли фильтрованием, а полученные растворы обрабатывали 3–5 мл хлороформа. Экстракцию продуктов гидролиза проводили трехкратно. Полученные элюенты объединяли, высушивали на воздухе и растворяли в 100 мл гексана (квалификации «х. ч.»). Для анализа полученных проб использовали метод газовой хроматографии с масс-селективным детектированием (ГХ-МС). ГХ-МС проводили на газовом хроматографе Agilent Technologies 5975 с масс-селективным детектором MSD 7890. Хроматографические пики сравнивали с библиотеками NIST 08 и Wiley 10^th Edition 2013 г. Относительное содержание компонентов (%) в исследуемых фракциях рассчитывали на основании площади хроматографических пиков.

Для установления противовоспалительной активности исследуемого пелоидопрепарата in vivo выбрана модель ревматоидного артрита, который воспроизводили субплантарным введением в правую заднюю лапку крысы 0,1 мл адъюванта Фрейнда (взвесь БЦЖ в вазелиновом масле). Терапевтический эффект оценивали по результатам морфологических показателей, как наиболее объективных с точки зрения доказательной медицины. Гистологическому исследованию подвергали ткани иммунокомпетентных органов: регионарных лимфатических узлов, селезенки, печени.

Эксперимент проводили на белых беспородных крысах массой 180–200 г; животные были разделены на четыре группы: 1-я — контроль (здоровые крысы), 2-я — группа сравнения (крысы с адъювант-индуцированным артритом), 3-я — опытная группа (крысы с адъювант-индуцированным артритом, которых лечили препаратом ГМК), 4-я — здоровые животные, которым вводили ГМК.

Введение ГМК в виде 0,1 % водного раствора (рН = 7,4) начинали с 14-го дня после инъекции адъюванта и проводили ежедневно в течение 10 дней. Воспалительную реакцию оценивали на 17, 21 и 26-е сутки от начала эксперимента (3, 7, 12-е сутки после введения ГМК). Животных выводили из эксперимента методом декапитации. Кусочки регионарных лимфатических узлов размером не более 0,5 см³ фиксировали в 10 % забуференном формалине, после чего заливали в парафин по стандартной методике. Срезы толщиной 7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином.

Для статистической обработки данных использован t-критерий Стьюдента, как наиболее часто используемый метод обнаружения различий между средними значениями двух выборок с помощью пакета прикладных программ Statistica 8.0. Различия считали значимыми при р < 0,05.

Результаты и обсуждение

Элементный состав исследуемого препарата в мольных процентах указан в табл. 1.

 

Таблица 1. Элементный состав в мольных процентах / Table 1. Elemental composition (mole percent)

Определяемый элемент	мол.%
Углерод	35,21
Водород	51,23
Кислород	17,08
Азот	1,50

 

На рис. 1 приведен ИК-спектр препарата ГМК, в котором присутствуют все характеристические полосы, отвечающие колебаниям карбоксильной группы (1715 см^–1), карбоксилат-иона (1630 см^–1), а также набор полос, соответствующих колебаниям связей в алифатических фрагментах (3600–3400 см^–1).

 

Рис. 1. Инфракрасный спектр гиматомелановых кислот / Fig. 1. IR spectrum of hymatomelanic acids

 

Качественно в ЯМР-спектре ГМК содержатся сигналы алифатических (0,6–1,7 м. д.), аллильных (1,8–2,8 м. д.), карбонильных (3,2–4,8 м. д.) и ароматических (6–9 м. д.) протонов. Количественная оценка, осуществленная путем интегрирования площадей сигналов, доказывает, что в составе ГМК относительное содержание протонов убывает в ряду: карбонильные – алифатические – ароматические. Наличие в составе препарата атомов углерода карбонильного типа доказывается сигналами в области 170 и 210–225 м. д. В интервале 110–130 м. д. присутствует триплет, соответствующий атомам углерода как олефинового, так и Н-замещенного ароматического характера.

Анализ хлороформного экстракта гидролизата ГМК (рис. 2) позволил выявить и идентифицировать 30 компонентов. В хлороформный экстракт в основном входят глицерин, молочная и стеариновая кислоты. Установлено, что относительное содержание насыщенных жирных кислот составляет 26,67 %, ненасыщенных — 10,34 %, эфиров жирных кислот — 8,72 %. Общее содержание жирных кислот и их производных в гидролизате составило 45,73 %. Следует отметить присутствие соединений ароматического характера, таких как ванилиновая кислота, фталиевая кислота и ее производные и других веществ, общее содержание которых составляет 10,27 %. В составе гидролизата фракция жирных спиртов представлена в количестве 12,23 %.

 

Рис. 2. Хроматограмма хлороформного экстракта гидролизата гиматомелановых кислот / Fig. 2. Chromatogram of chloroform hydrolysate extract of hymatomelanic acid

 

При введении здоровым животным гиматомелановых кислот во всех изучаемых органах гистологические изменения находились в пределах физиологической нормы.

В результате введения адъюванта Фрейнда у крыс проявляется ярко выраженная воспалительная реакция сустава правой лапы — она опухает, животное ограничивает себя в движениях. При вскрытии было зафиксировано, что регионарный лимфатический узел на стороне поражения несколько увеличен по сравнению с лимфоузлами здоровых крыс.

Патоморфологическое исследование ткани регионарных лимфатических узлов показало значительные изменения у крыс с адъювантным артритом. Капсула резко отечна и за счет этого утолщена и мутного вида. Характерно резкое расширение субкапсулярных синусов и краевое стояние гранулоцитов в них. Лимфатические узелки в корковом веществе разного размера, в то время как у здоровых крыс они преимущественно одинаковые. В герминативных центрах обнаруживаются крупные макрофаги. Паракортикальная зона несколько расширена по сравнению с нормой. Синусы мозгового вещества расширены и плотно заполнены клетками, среди которых много лимфоцитов и плазматических клеток. Стенки трабекулярных артерий утолщены за счет плазматического пропитывания, в результате чего просветы заметно сужаются.

К 21-м суткам утолщение капсулы нарастает за счет начавшегося склерозирования. Количество узелков с герминативными центрами немного уменьшается, вместе с тем увеличиваются их размеры в некоторых узелках, паракортикальная зона остается расширенной, но граница между ней и корковым веществом становится нечеткой.

К 26-м суткам размеры субкапсулярных синусов и синусов мозгового вещества уменьшаются, однако сохраняется плазматическое пропитывание стенок трабекулярных и центральных артерий. В лимфатических узелках коркового вещества обнаруживаются только мелкие герминативные центры.

Лимфатический узел на стороне, противоположной введению адъюванта, не остается неизменным (интактным), ткань его несколько отечна. Лимфатические узелки крупные, равномерные с герминативными центрами, в которых хорошо различимы лимфобластные элементы и крупные макрофаги. Синусы всего узла несколько расширены с увеличившимся в них числом плазмоцитов.

Применение гиматомелановых кислот пелоидов в значительной степени купирует воспалительный процесс. При внешнем осмотре животного уже на третьи сутки введения ГМК (17-е сутки эксперимента) мы отмечали уменьшение отека сустава, крыса начала пользоваться пораженной конечностью. На 7-е сутки лечения (21-е сутки эксперимента) полностью восстанавливается объем движения животных, отек спадает, внешне крысы не отличаются от группы контроля.

Изучение гистологических препаратов показывает, что в регионарных лимфатических узлах на третьи сутки лечения отек капсулы и стромы несколько слабее, чем в группе сравнения, и по мере лечения продолжает уменьшаться (табл. 2). Если толщина капсулы у крыс с хроническим иммунным воспалением на 17, 21 и 26-е сутки эксперимента в среднем составляет 8,54, 9,7 и 7,74 мкм, то при лечении этот показатель уменьшается до 6,43, 6,04 и 4,67 мкм соответственно (табл. 2).

 

Таблица 2. Изменение толщины капсул лимфатических узлов, мкм / Table 2. The change of thickness of lymphatic nodes capsules, µm

Лимфоузел		Серия
		I норма	II контроль (адъювант)	III адъювант + ГМК	IV ГМК
Правый	17-е сутки	2,62 ± 0,12	8,54 ± 0,19*	6,22 ± 0,14*, **	4,02 ± 0,15
	21-е сутки	2,50 ± 0,12	9,70 ± 0,14*	6,04 ± 0,11*, **	3,51 ± 0,08
	26-е сутки	2,53 ± 0,12	7,74 ± 0,13*	4,67 ± 0,14*, **	3,24 ± 0,10
Левый	17-е сутки	2,52 ± 0,11	2,86 ± 0,09	2,65 ± 0,27	2,68 ± 0,19
	21-е сутки	2,58 ± 0,13	2,80 ± 0,11	2,83 ± 0,11	2,68 ± 0,14
	26-е сутки	2,54 ± 0,12	2,47 ± 0,12	2,62 ± 0,30	2,68 ± 0,14

Примечание. Здесь и в табл. 3–6. * Статистически значимые отличия показателей от нормативных (р < 0,05); ** статистически значимые отличия показателей от контрольных (р < 0,05). ГМК — гиматомелановые кислоты.

Note. Here and in Table 3-6. * Statistically significant differences of the data as compared to regulatory limit (р < 0,05); ** statistically significant differences of the data as compared to control limits (р < 0,05).

 

К 12-м суткам от начала введения ГМК (26-е сутки эксперимента) проявление отека значительно меньше, чем в группе сравнения, однако полное восстановление структуры лимфоузла у животных пока не происходит. Восстанавливается соотношение зон органа, уменьшается плазматическое пропитывание стенок центральных и трабекулярных артерий, что предотвращает сужение их просвета.

Количество узелков с герминативными центрами имеет явную тенденцию к нормализации: к 26-м суткам эксперимента этот показатель, превышая контрольные цифры, значительно ниже, чем при адъювантном артрите (табл. 3).

 

Таблица 3. Количество лимфатических узелков с герминативными центрами в лимфатических узлах крыс, % / Table 3. The number of lymphatic nodules with germinal centers in the lymphatic nodes of rats, %

Лимфоузел		Серия
		I норма	II контроль (адъювант)	III адъювант + ГМК	IV ГМК
Правый	17-е сутки	25,75 ± 1,15	84,51 ± 2,76*	66,2 ± 1,81*, **	38,71 ± 0,90
	21-е сутки	24,53 ± 2,04	76,92 ± 3,54*	59,46 ± 2,19*, **	43,64 ± 1,28*
	26-е сутки	24,59 ± 0,75	69,35 ± 1,18*	44,78 ± 1,13**	34,18 ± 0,56
Левый	17-е сутки	23,73 ± 0,92	62,71 ± 1,53*	61,29 ± 2,03*	29,85 ± 1,89
	21-е сутки	23,33 ± 1,22	65,15 ± 1,37*	46,43 ± 1,56*	33,80 ± 0,82
	26-е сутки	25,86 ± 0,86	72,73 ± 1,15*	35,00 ± 1,06**	33,33 ± 0,79

 

Селезенка у животных с адъювантным артритом на 17-е сутки эксперимента набухшая, капсула утолщена и мутноватая. При гистологических исследованиях также отмечен резкий отек тканей органа. На 21-е сутки мы наблюдаем наиболее ярко выраженные изменения в селезенке, вызванные введением адъюванта Фрейнда (табл. 4, 5).

 

Таблица 4. Изменение толщины капсулы селезенки на модели адъювантного артрита, мкм / Table 4. The change in the width of splenic capsule on the model of adjuvant arthritis, µM

Серия	17-е сутки	21-е сутки	26-е сутки
I норма	1,67 ± 0,11	1,67 ± 0,09	1,55 ± 0,10
II контроль (адъювант)	8,3 ± 0,14*	9,11 ± 0,12*	6,13 ± 0,13*
III адъювант + ГМК	5,86 ± 0,13*, **	4,43 ± 0,14*, **	3,21 ± 0,09*, **
IV ГМК	2,83 ± 0,11	2,20 ± 0,09	1,67 ± 0,10

 

Таблица 5. Относительное содержание лимфатических узелков с центрами размножения в селезенке, % / Table 5. Relative level of lymphatic nodules with germinal center in the spleen, %

Серия	17-е сутки	21-е сутки	26-е сутки
I норма	31,33±1,13	31,88±0,32	31,99±0,06
II контроль (адъювант)	79,63±0,51*	80,26±0,98*	63,64±0,89*
III адъювант + ГМК	60,38±1,61*, **	60,27±0,97*, **	48,72±2,07
IV ГМК	45,88±1,06	43,75±0,47	29,07±1,27

 

Характерно плазматическое пропитывание стенок центральных и трабекулярных артерий, в результате чего стенки утолщены, слои их плохо различимы; просветы артерий сужены. Вместе с тем отмечается резкое расширение и венозное полнокровие отдельных сосудов. Венозные синусы переполнены эритроцитами. Отмечаются разрывы стенок синусов с имбибированием эритроцитами красной пульпы и маргинальной зоны. Трабекулы утолщены за счет отека, лимфоидные узелки преимущественно крупные, увеличивается число узелков с крупными герминативными центрами.

Морфологические изменения, так же как и в лимфатических узлах, максимально выражены на 21-е сутки. Нарастает отек капсулы и размеры субкапсулярных синусов, увеличивается имбибирование коркового вещества эритроцитами. Лимфоидные узелки крупные, с большими центрами размножения и широкой краевой зоной.

К 26-м суткам отек капсулы селезенки несколько спадает, фолликулы разного размера с очень крупными центрами. Границы отдельных фолликулов нечеткие. Происходит огрубение коллагеновых тканей волокон в трабекулах.

При осмотре селезенки животных, которым вводили гиматомелановые кислоты на фоне адъювантного артрита, отмечается некоторое ее набухание, однако оно было менее выраженным, чем у крыс из группы сравнения.

На третьи сутки введения гиматомелановых кислот (17-е сутки эксперимента) гистологические исследования показали, что отек капсулы и стромы органа слабее по сравнению с животными второй серии, центральные и трабекулярные артерии умеренно сужены, с несколько утолщенной за счет плазматического пропитывания стенкой. Некоторые синусы «переполнены» эритроцитами; наблюдается имбибирование ими отдельных участков красной пульпы. Характерно увеличение количества крупных макрофагов в синусах, много плазматических клеток и эозинофилов, многие макрофаги содержат гемосидерин. Преимущественно в области ворот, в том числе под капсулой, — скопление кроветворных клеток.

На 21-е сутки у животных третьей серии характерна мозаичность изменений в селезенке: в некоторых участках наряду с очагами выраженных воспалительных изменений наблюдаются участки органа, в которых структура изменена незначительно. Особенно хорошо это заметно на примере центральных артерий: некоторые из них с очень узким просветом и толстой стенкой, у других стенка незначительно утолщена и размер просвета не отличается от здоровых животных. В мозговом веществе можно видеть очаговые кровоизлияния и увеличение количества эритроцитов в синусах, в центральных наблюдается много макрофагов, нагруженных гемосидерином.

К концу наблюдения (26-е сутки) отек и расширение синусов незначительны. В синусах больше, чем в норме, эритроцитов, они располагаются по периферии синусов. Лимфоидные узелки преимущественно небольшие, с мелкими герминативными центрами.

Введение адъюванта Фрейнда провоцирует нарушение структуры долек печени. Во многих дольках трабекулярное строение нарушено, клетки приобретают овальную или округлую форму, размеры большинства клеток увеличены. Границы между клетками определяются нечетко, цитоплазма имеет мутный вид, ядра разного размера. Характерно разнообразие в размерах и структурах ядер: встречаются крупные светлые ядра, хроматин в которых расположен по периферии под нуклеолеммой; есть клетки с ядрами в состоянии пикноза и рексиса. В отдельных дольках можно видеть микроучастки некроза, инфильтрованные лимфоцитами, отдельными плазматическими клетками и макрофагами.

Центральные вены и вены триад застойны, вокруг центральных вен наблюдается «кольцо отека», в области триад — склероз, плазматическое пропитывание стенок артериол.

На 21-е сутки застой в центральных венах сохраняется, вокруг них появляются зрелые коллагеновые волокна. Поля склероза вокруг триад увеличиваются. На 26-е сутки к наблюдаемым раньше изменениям присоединяется развитие соединительной ткани по периферии долек, увеличивается количество двуядерных гепатоцитов (табл. 6).

 

Таблица 6. Относительное содержание двуядерных клеток в печени (на 200 гепатоцитов), % / Table 6. Relative level of binuclear cells in the liver (per 200 hepatocytes), %

Серия	17-е сутки	21-е сутки	26-е сутки
I норма	1,83 ± 0,17	1,83 ± 0,17	1,83 ± 0,17
II контроль (адъювант)	2,33 ± 0,17	2,17 ± 0,17	2,33 ± 0,17
III адъювант + ГМК	4,33 ± 0,17*, **	4,67 ± 0,33*, **	3,33 ± 0,17*
IV ГМК	3,17 ± 0,33*	3,17 ± 0,17*	2,83 ± 0,33

 

У животных, которым вводили гиматомелановые кислоты, в печени сохраняется структура большинства долек, отсутствуют некрозы, а явления кариопикноза и кариорексиса единичны. Застой в центральных венах и венах триад на 17-е сутки умеренный, а к концу наблюдения можно видеть лишь одиночные застойные вены. Характерно значительное увеличение количества двуядерных клеток как по сравнению с нормой, так и с животными, которым не вводили препарат, уже с 17-х суток наблюдения. Это увеличение максимально на 21-е сутки и сохраняется до конца наблюдения на фоне адъювантного артрита.

Выводы

Идентификационные характеристики ГМК пелоидов, полученные комплексом физико-химических методов, дополняют перечень дескрипторов и могут использоваться для контроля качества исследуемого препарата.

По результатам морфометрического исследования при лечении ревматоидного артрита гиматомелановые кислоты проявляют терапевтический эффект, нарастающий с увеличением курсовой дозы. Максимальный противовоспалительный эффект препарата был выявлен к 26-м суткам эксперимента. Анализ гистологических препаратов исследуемых органов объективно доказывает выраженное противовоспалительное действие пелоидопрепаратов на основе гиматомелановых кислот при хроническом аутоиммунном воспалении.

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Соответствие принципам этики. Протокол исследования был одобрен локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» (№ 2 от 16.09.2020).

Об авторах

Надежда Петровна Аввакумова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Автор, ответственный за переписку.
Email: n.p.avvakumova@samsmu.ru

доктор биологических наук, профессор, заведующая кафедрой медицинской химии

Россия, Самара

Елена Евгеньевна Катунина

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: e.e.katunina@samsmu.ru

кандидат биологических наук, доцент, доцент кафедры медицинской химии

Россия, Самара

Мария Ариевна Кривопалова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: m.a.krivopalova@samsmu.ru

кандидат химических наук, доцент, доцент кафедры медицинской химии

Россия, Самара

Алина Валитовна Жданова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: a.v.zhdanova@samsmu.ru

кандидат фармацевтических наук, доцент, доцент кафедры медицинской химии

Россия, Самара

Мария Николаевна Глубокова

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: m.n.glubokova@samsmu.ru

кандидат фармацевтических наук, доцент, доцент кафедры медицинской химии

Россия, Самара

Максим Николаевич Качалкин

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

Email: m.n.kachalkin@samsmu.ru

ассистент кафедры химии института фармации

Россия, Самара

Список литературы

Дополнительные файлы